{"id":380,"date":"2016-12-27T21:14:17","date_gmt":"2016-12-27T20:14:17","guid":{"rendered":"http:\/\/www.thrips-id.com\/de\/?page_id=380"},"modified":"2024-06-17T19:05:38","modified_gmt":"2024-06-17T17:05:38","slug":"praeparation","status":"publish","type":"page","link":"https:\/\/www.thrips-id.com\/de\/sammlung\/praeparation\/","title":{"rendered":"Fang & Pr\u00e4paration"},"content":{"rendered":"

[vc_row][vc_column][vc_raw_html css=“.vc_custom_1485895119019{padding-right: 8px !important;}“]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[\/vc_raw_html][vc_tta_tabs style=“outline“ color=“black“ spacing=“2″ active_section=“1″ no_fill_content_area=“true“][vc_tta_section title=“Fangmethoden“ tab_id=“1483906386328-ccefb9f2-1a9c“][vc_column_text css_animation=“bottom-to-top“ css=“.vc_custom_1485733907873{padding-right: 20px !important;padding-left: 20px !important;}“]Fangmethoden<\/strong><\/p>\n


\nMit dem Klopfnetz am Wacholder (<\/span>Fotos: J\u00f6rg Weiss<\/span>)<\/span><\/p>\n

 <\/p>\n

Selektive Methoden:<\/strong> Fransenfl\u00fcgler lassen sich sehr gut mit Klopfnetzen oder -schirmen aus Baumwolltuch (Nesselstoff) erfassen. Der Klopfschirm wird dabei unter die Vegetation gehalten und die Pflanzen mittels eines Stockes so abgeklopft, dass die Tiere auf das Tuch fallen. Da Thysanopteren im allgemeinen recht fluginaktiv sind, verweilen sie lange genug auf dem Tuch um von dort mit einem feuchten feinen Pinsel in Probenr\u00f6hrchen (s.u.) aufgenommen zu werden. Diese Methode l\u00e4sst eine exakte Zuordnung der gesammelten Tiere zu den Pflanzenarten zu, an denen sie erfasst wurden.<\/p>\n

Zum Fang von Thysanopteren an Gr\u00e4sern oder von niederen krautigen Pflanzen haben sich Streifkescher aus Baumwolltuch bew\u00e4hrt, die mit schnellen Bewegungen durch Vegetation geschlagen werden.<\/p>\n

 <\/p>\n

Fallenf\u00e4nge:<\/strong> Fransenfl\u00fcgler lassen sich auch mit unterschiedlichen Fallen, wie Eklektoren oder Malaise-Fallen, erfassen. Allerdings ist dabei der Anteil dieser Tiere am Gesamtfang im Verh\u00e4ltnis zu anderen Insektenordnungen recht gering und die Arbeit des Auslesens der Thysanopteren aus den Proben sehr zeitaufwendig. Bestimmte Fragestellungen k\u00f6nnen dennoch den Einsatz von Fallen rechtfertigen: so lassen sich z.B. Daten zur Jahresrhythmik (Schl\u00fcpfph\u00e4nologie\/Aktivit\u00e4tsdichte) einzelner Arten kaum besser als durch Boden-Photoeklektoren gewinnen. Eine kurze Diskussion der Eklektormethode finden Sie in folgender Publikation: Ulitzka, M.R. (2009): Fransenfl\u00fcgler-Emergenzen am Stamm von Apfelb\u00e4umen (Insecta, Thysanoptera). Entomologische Zeitschrift 119: 183 \u2013 189. \u00a0 \u00a0 PDF-Download<\/a><\/p>\n

Thysanopteren lassen sich auch recht effektiv mit Farbfallen fangen. Farbige Leimtafeln allerdings, wie man sie im Kulturpflanzenschutz einsetzt, sind f\u00fcr Probennahmen mit taxonomischer Zielsetzung v\u00f6llig ungeeignet, da die Tiere komplett mit Leim verkleben und kaum wieder abzul\u00f6sen sind. Weit besser eignen sich farbige Schalen, die man einfach und kosteng\u00fcnstig aus Einweggegschirr-Sch\u00fcsseln herstellen kann: Die Sch\u00fcsseln werden auf der Innenseite mit gelber bzw. blauer Farbe gestrichen und mit einer Fangfl\u00fcssigkeit gef\u00fcllt. Als solches Fangmedium kann man Wasser oder niederprozentigen Alkohol verwenden, dem ein Tropfen Detergens (Sp\u00fclmittel) zugesetzt ist, damit die Tiere untergehen. Tendenziell werden in Gelbschalen eher Bl\u00fctenbewohner, in Blauschalen eher Blattbewohner gefangen.[\/vc_column_text][vc_media_grid element_width=“3″ item=“mediaGrid_SlideInTitle“ initial_loading_animation=“bounceIn“ grid_id=“vc_gid:1718643907978-fae38d8fad0b581ed1ab040a5ca5a210-9″ include=“2346,2343,2344,2347″][\/vc_tta_section][vc_tta_section title=“Vorkonservierung“ tab_id=“1483906394126-06b7738a-aef5″][vc_column_text css_animation=“bottom-to-top“ css=“.vc_custom_1483993561869{padding-right: 20px !important;padding-left: 20px !important;}“]Vorkonservierung<\/strong><\/p>\n

Die erfassten Thysanopteren werden mit einem Pinsel in mit AGA gef\u00fcllte Fangr\u00f6hrchen (Mitte) \u00fcberf\u00fchrt<\/p>\n

 <\/p>\n

Die gefangenen Fransenfl\u00fcgler m\u00fcssen zun\u00e4chst in eine Fl\u00fcssigkeit zur Vorkonservierung \u00fcberf\u00fchrt werden. Selektiv gefangene Tiere k\u00f6nnen direkt aus den Netzen mit einem Pinsel in vorbereitete Probenr\u00f6hrchen verfrachtet werden. Zur Vorkonservierung sind hochprozentiger Alkohol (Spiritus), Formol oder Pikrins\u00e4ure nicht geeignet, da diese L\u00f6sungen Proteine durch Denaturierung h\u00e4rten und so die weitere Pr\u00e4paration erschweren bzw. unm\u00f6glich machen. Als g\u00fcnstig hingegen hat sich ein Konservierungsmedium nach Vizthum erwiesen, das heute eher unter dem Namen AGA (Alcohol-Glycerol-Acetic Acid) bekannt ist. Dieses besteht aus 10 Teilen Ethanol 60%, 1 Teil Glycerin, 1 Teil Eisessig, au\u00dferdem werden einige Tropfen Detergens zugesetzt, damit die kleinen Insekten absinken. Die Tiere bleiben darin \u00fcber lange Zeit (erfahrungsgem\u00e4\u00df bei dunkler und k\u00fchler Lagerung bis zu 5 Jahre) weich und gut pr\u00e4parierbar. Ein \u00e4u\u00dferst g\u00fcnstiger Nebeneffekt von AGA ist, dass dieses Medium in den K\u00f6rper der konservierten Arthropoden eindringt und so durch die Steigerung des osmotischen Druckes bewirkt, dass sich die Tiere strecken und ihre Fl\u00fcgel und Beine abgespreizt werden.<\/p>\n

Zwingend notwendig ist die Aufnahme von Fangdaten (Ort, Pflanze, …). Diese kann man mit Bleistift auf kleine vorbereite Zettel schreiben und direkt mit in die Probenr\u00f6hrchen legen.[\/vc_column_text][\/vc_tta_section][vc_tta_section title=“Werkzeuge“ tab_id=“1483906469019-ef8adbce-c092″][vc_column_text css_animation=“bottom-to-top“ css=“.vc_custom_1483996981095{padding-right: 20px !important;padding-left: 20px !important;}“]Werkzeuge<\/strong><\/p>\n

Werkzeuge: (1) Embryoschale, (2) Probenr\u00f6hrchen, (3) Pasteurpipette, (4) Schablone zur Markierung der Objekttr\u00e4germitte, (5) Deckgl\u00e4schen, (6)\u00a0Drahtschlinge, (7) Pr\u00e4pariernadel, \u00a0(8) hakenf\u00f6rmige Nadel, (9) feinste Nadel in Kan\u00fcle eingequetscht, (10) spitze Pinzette.<\/p>\n

 <\/p>\n

Zur Pr\u00e4paration der kleinen Insekten sind zun\u00e4chst einmal Werkzeuge notwendig, die mit der geringen K\u00f6rpergr\u00f6\u00dfe in Einklang stehen. Normale Pr\u00e4pariernadeln sind daher ungeeignet.<\/p>\n

Zum Ausrichten und Anstechen der Tiere haben sich Minutienstifte (Durchmesser 0,15mm), die zum Nadeln kleinster Insekten verwendet werden, oder feine Akupunkturnadeln (z.B. Seirin J-Type 1430, 0,14 x 30 mm) bew\u00e4hrt. Zur besseren Handhabung kann man diese in eine d\u00fcnne, durch Ausgl\u00fchen weich gemachte, Injektionskan\u00fcle einquetschen und\u00a0die Kan\u00fcle wiederum in einen g\u00e4ngigen Nadelhalter einschrauben. Ein Einkleben der Nadeln ist ung\u00fcnstig, da die organischen L\u00f6semittel die meisten Kleber mit der Zeit aufl\u00f6sen.<\/p>\n

Zum Umsetzten der Tiere zwischen den einzelnen Pr\u00e4parierl\u00f6sungen sind kleine Drahtschlingen oder -gabeln (Letztere kann man durch Aufschneiden der Schlinge herstellen) sehr gut geeignet. Feiner Draht (Durchmesser 0,25mm – 0,3mm; z.B. von elektrischen Spulen) wird zu einer Schlinge verdreht und wiederum in eine Kan\u00fcle eingequetscht.<\/p>\n

F\u00fcr die Pr\u00e4paration sind zudem g\u00e4ngige Pr\u00e4parierwerkzeuge wie feine Nadeln, Haken oder spitze feine Pinzetten z.B. zum Auflegen und Ausrichten der Deckgl\u00e4schen notwendig. F\u00fcr die einzelnen Pr\u00e4parierl\u00f6sungen sind kleine Sch\u00e4lchen mit Abdeckung (sogenannte Embryoschalen) n\u00f6tig.[\/vc_column_text][\/vc_tta_section][vc_tta_section title=“Pr\u00e4paration – Imagines“ tab_id=“1483993987808-9a14b058-53da“][vc_column_text css_animation=“bottom-to-top“ css=“.vc_custom_1487105326683{padding-right: 20px !important;padding-left: 20px !important;}“]Pr\u00e4paration von Imagines<\/strong><\/p>\n

Fertiges Pr\u00e4parat:
\nDas Tier liegt mittig, mit ge\u00f6ffneten Fl\u00fcgeln und abgespreizten Beinen. Die Beschriftung gibt Informationen zu Art, Geschlecht und dem Habitat, in dem das Tier erfasst wurde.<\/p>\n

 <\/p>\n

Pr\u00e4parate f\u00fcr taxonomische Zwecke<\/strong><\/p>\n

Pr\u00e4parate\u00a0f\u00fcr\u00a0taxonomische Zwecke werden in Kanadabalsam eingebettet. Die hervorragende Haltbarkeit dieses Einbettungsmediums verbunden mit herausragenden optischen Eigenschaften l\u00e4sst kaum Alternativen zu.<\/p>\n

Will man eine gr\u00f6\u00dfere Sammlung anlegen, so wird man auf geschnittene Objekttr\u00e4ger verzichten und eher Varianten mit geschliffenen Kanten benutzen. Als Deckgl\u00e4schen verwendet man runde Gl\u00e4ser der St\u00e4rke 1 (0,13 – 0,16mm) mit einem Durchmesser von 12mm (f\u00fcr tropische Riesenformen 15mm).<\/p>\n

Ein fertiges Pr\u00e4parat sollte folgende Eigenschaften aufweisen:<\/p>\n

\u2022 Gute Sichtbarkeit der Merkmale
\nMeist werden die Tiere in Dorsoventral-Lage pr\u00e4pariert. Bei Pr\u00e4parateserien sollten immer einige Tiere lateral liegen. Fl\u00fcgel und Beine sollten abgespreizt sein.<\/p>\n

\u2022 Lichtdurchl\u00e4ssigkeit
\nInsbesondere gro\u00dfe bzw. dunkle Formen m\u00fcssen mit KOH gebleicht (mazeriert) werden, damit feine Strukturen in der Chitinkutikula beurteilbar sind. Auch durch Nelken\u00f6l (s.u.) lassen sich die Pr\u00e4parate aufhellen
\nDie oben genannte Bleichung sollte so erfolgen, dass die urspr\u00fcngliche F\u00e4rbung der Tiere nicht verloren geht. Bei Serienpr\u00e4paraten gleicher Arten sollten stets einige Individuen ungebleicht eingebettet werden. Gebleichtes Material liefert grunds\u00e4tzlich keine Informationen zur F\u00e4rbung des Occellar- oder Hypodermalpigments, die jedoch oft artenspezifische Merkmale darstellt.<\/p>\n

\u2022 Handhabbarkeit
\nUm eine lange Suche des Objekts unter dem Mikroskop zu vermeiden, sollte die Tiere m\u00f6glichst mittig auf dem Objekttr\u00e4ger liegen. Vorteilhaft ist zudem die Ausrichtung der kleinen Insekten mit deren Kopf zum unteren Rand des Objekttr\u00e4gers. Durch die optisch bedingte Umkehr erscheinen sie dann bei der mikroskopischen Betrachtung aufrecht.
\nSo angefertigte Pr\u00e4parate kann man sogar \u00fcbereinanderlegen und durch \u00c4nderung der Sch\u00e4rfeeinstellung die Tiere direkt miteinander vergleichen („durchscannen“).<\/p>\n

\u2022 Haltbarkeit
\nPr\u00e4parate zu taxonomischen Zwecken sind nur dann von wissenschaftlichem Wert, wenn sie \u00fcber lange Zeitr\u00e4ume unver\u00e4ndert erhalten bleiben und so zu Vergleichszwecken dienen k\u00f6nnen. Daher kommt zur Herstellung derartige Pr\u00e4parate ausschlie\u00dflich Kanadabalsam in Frage.<\/p>\n

Antike Referenzpr\u00e4parate in vielen Museen beweisen, dass in Kanadabalsam eingebettete Insekten bei lichtgesch\u00fctzter Lagerung mindestens 250 Jahre unver\u00e4ndert \u00fcberstehen.<\/p>\n

 <\/p>\n

Vom vorkonservierten Thrips zum fertigen (mazerierten) Dauerpr\u00e4parat:<\/strong>
\nF\u00fcr Pr\u00e4parate ohne\u00a0Mazeration\u00a0entfallen die Punkte 3 und 4.<\/p>\n

1) Die Tiere werden aus den Probenr\u00f6hrchen mit AGA mittels einer Pateurpipette in eine erste Embryoschale pipettiert. Von dort werden sie mit einer Drahtgabel in eine Waschl\u00f6sung (Ethanol 40%) \u00fcberf\u00fchrt.<\/p>\n

2) In der Waschl\u00f6sung verbleiben die Tiere mindestens 10 Minuten. Sie werden zudem ventral in den Intersegmentalh\u00e4utchen der Abdominalsternite mit einer feinen Nadel angestochen. Dies erm\u00f6glicht einen schnelleren Fl\u00fcssigkeitsaustausch und verhindert ein Kollabieren bei der sp\u00e4teren Entw\u00e4sserung im Ethanol.<\/p>\n

3) Aus der Waschl\u00f6sung werden die Tiere nun mit einer Drahtgabel in die n\u00e4chste Embryoschale mit Kalilauge (5%) \u00fcberf\u00fchrt. Je nach Gr\u00f6\u00dfe und Ausgangsfarbe verbleiben sie nun bis zu 24 Stunden in der Lauge. Dabei ist es sinnvoll von Zeit zu Zeit mit einer gebogenen Nadel ihr Abdomen vorsichtig zusammenzudr\u00fccken, um die sich nach und nach zersetzenden Eingeweide und verseifenden Fette herauszumassieren.<\/p>\n

4) Nun werden die Tiere erneut in eine Waschl\u00f6sung (Ethanol 40%) \u00fcberf\u00fchrt, wo sie ca. 10 Minuten verbleiben.<\/p>\n

5) Nun folgt die Entw\u00e4sserung in der Alkoholreihe. In kleinen Sch\u00e4lchen werden folgende Ethanol-Konzentrationen vorbereitet: 80%, 90% und Ethanol absolut (96%). Die Tiere verbleiben in jeder L\u00f6sung mindestens 10 bis 15 Minuten, gro\u00dfe Individuen l\u00e4nger.<\/p>\n

6) Nun m\u00fcssen die Tiere in ein Medium \u00fcberf\u00fchrt werden, das sich in Kanadabalsam l\u00f6st. Besonders geeignet ist aus mehreren Gr\u00fcnden etherisches Nelken\u00f6l (Oleum syzygii aromatici<\/em>): Es ist wesentlich weniger giftig als Xylol oder Terpineol und hellt zudem die Pr\u00e4parate auf. Sollten die\u00a0Thysanopteren kollabieren, so wurde unvollst\u00e4ndig, d.h. zu kurz, mazeriert. Es d\u00fcrfen sich keinerlei Organreste\u00a0im K\u00f6rper\u00a0befinden!<\/p>\n

7) Nun folgt die eigentliche Erstellung des Pr\u00e4parats:
\nEin Objekttr\u00e4ger wird auf eine Schablone, die dessen Mitte markiert, gelegt und ein Tropfen Kanadabalsam mit einem Glasstab aufgebracht. Nun wird das Tier mit einer gebogenen Nadel aus dem Nelken\u00f6l in das Balsam \u00fcberf\u00fchrt und unter der Stereolupe mit einer feinsten Nadel vorsichtig ausgerichtet (siehe oben:\u00a0Handhabbarkeit von Pr\u00e4paraten). Mit einer spitzen Pinzette muss nun das Deckglas so aufgelegt und etwas angedr\u00fcckt werden, dass das kleine Insekt mittig verbleibt. Mit etwas \u00dcbung kann man durch Bewegen des Deckglases das Tier auch noch geringf\u00fcgig zurechtr\u00fccken.<\/p>\n

8) Sinnvoll ist das Vortrocknen der Pr\u00e4parate auf einer Heizplatte (sog. Objekttr\u00e4ger-Strecktisch) bei 45\u00b0C um sie vorab zu fixieren. Die eigentliche Trocknung erfolgt \u00fcber vier bis sechs Wochen im W\u00e4rmeschrank bei einer Temperatur von etwa 40\u00b0C.<\/p>\n

 <\/p>\n

Pr\u00e4parate f\u00fcr Routineuntersuchungen:<\/strong><\/p>\n

Um schnell und kosteng\u00fcnstig Pr\u00e4parate f\u00fcr Routineuntersuchungen herzustellen, kann man folgende Medien verwenden:<\/p>\n

1) Einschlussmittel nach Hoyer (genaue Angaben zur Herstellung dieses Mediums finden Sie unter Pr\u00e4parate von Thysanopterenlarven<\/a>)<\/p>\n

2) CMC 10 Mountant (Masters Company, Inc., 890 Lively Blvd. Wood Dale, IL 60191, masterscoinc@aol.com)<\/p>\n

Beide Medien sind zwar weniger gut f\u00fcr permanente Dauerpr\u00e4parate geeignet, aber bei gewissenhafter Herstellung durchaus viele Jahre haltbar; insbesondere wenn die Pr\u00e4parate mit Umrandungslack versiegelt werden.<\/p>\n

Zur Pr\u00e4paration werden die Tiere aus dem Vorkonservierungsmedium in 50%iges Ethanol \u00fcberf\u00fchrt. Nach ca. 10 Minuten kann man sie dann auf einem Objekttr\u00e4ger in einen Tropfen des Einbettungsmediums einbringen, ausrichten und mit einem Deckglas abdecken.<\/p>\n

Nach dem Trocknen sollte die Kante zwischen Deckglas und Objekttr\u00e4ger durch Umrandung mit einem speziellen Umrandungslack versiegelt werden (Angaben zur Herstellung eines geeigneten Lackes finden Sie unter Pr\u00e4paration von Thysanopterenlarven<\/a>).<\/p>\n

Eine sehr ausf\u00fchrliche Darstellung alternativer Pr\u00e4parationsmethoden\u00a0finden Sie in folgender Publikation: Silveira & Haro (2016): Fast slide preparation for thrips (Thysanoptera) routine identifications<\/a>. European Journal of Entomology<\/em> 113: 403-408.<\/p>\n


\nFertige Pr\u00e4parate: Bereit zum Einsortieren in die Sammlung.[\/vc_column_text][\/vc_tta_section][vc_tta_section title=“Pr\u00e4paration – Larven“ tab_id=“1483911720964-ae0d4a53-85fc“][vc_media_grid element_width=“2″ item=“mediaGrid_ScaleInWithIcon“ css=““ grid_id=“vc_gid:1718643908070-c83adfd89a9e4b311834546456fdc945-8″ include=“7143,7144,7145,7146,7147,7214″][vc_column_text css_animation=“bottom-to-top“ css=“.vc_custom_1710519223255{padding-right: 20px !important;padding-left: 20px !important;}“]Pr\u00e4paration von Thysanopterenlarven<\/strong><\/p>\n

Die Pr\u00e4paration von Thysanopterenlarven unterscheidet sich grundlegend von der ihrer Imagines. \u00a0F\u00fcr Dauerpr\u00e4parate von Imagines ist Kanadabalsam das wohl geeignetste Einschlussmedium. F\u00fcr Larven hingegen ist es ungeeignet. Der Grund liegt in der schwachen Sklerotisierung der juvenilen Tiere. Die d\u00fcnne Chitincuticula h\u00e4lt der notwendigen Prozedur der Mazeration, Entw\u00e4sserung und \u00dcberf\u00fchrung in ein unpolares L\u00f6sungsmittel (meist Nelken\u00f6l, Xylol oder Terpineol) nicht stand. In der Regel kollabieren die kleinen Insekten beim letztgenannten Schritt und werden dadurch unbrauchbar. \u00c4ltere Pr\u00e4parate von Priesner oder von zur Strassen in der Sammlung der Senckenbergischen Naturforschenden Gesellschaft zeigen zwar, dass eine Einbettung in Kanadabalsam ohne Mazeration m\u00f6glich ist, jedoch sind solche Pr\u00e4parate von geringem Wert, da die feinen Merkmale der Cuticula (Miliarskulptur) kaum sichtbar sind.<\/p>\n

Ein bew\u00e4hrtes Einschlussmittel f\u00fcr die Juvenilstadien ist hingegen das zweitweise fast in Vergessenheit geratene Medium nach Hoyer. Es ist zum einen hydrophil, zum anderen durch das enthaltene Chloralhydrat gleichzeitig bleichend; Mazeration und Entw\u00e4sserung sind dadurch hinf\u00e4llig. Im folgenden ist die Herstellung des Mediums nach Hoyer beschrieben. Machen Sie sich unbedingt mit den Sicherheitshinweisen zu den Reagenzien\u00a0vertraut; Chloralhydrat<\/a> ist ein Hypnotikum und giftig!<\/p>\n

Medium nach Hoyer: <\/strong>
\n\u30fbGummi arabicum: 5,2g
\n\u30fbDestilliertes Wasser: 8,8ml
\n\u30fbGlycerin (99%, wasserfrei):1,8ml
\n\u30fbChloralhydrat: 35,2g<\/p>\n

Zun\u00e4chst wird das Gummi arabicum mit der genannten Menge an Wasser versetzt, wobei es quillt und sich dann allm\u00e4hlich l\u00f6st. Nun werden unter R\u00fchren das Glycerin und abschlie\u00dfend das Chloralhydrat zugegeben.\u00a0Die Mischung kann mit einem Magnetr\u00fchrer vermengt werden. Sie erscheint dann zun\u00e4chst durch mit einger\u00fchrte Luftbl\u00e4schen milchig, wird aber nach kurzer Standzeit wieder klar. Das fertige Medium ist leicht gelblich, aber wasserklar und hat die Konsistenz von fl\u00fcssigem Honig.<\/p>\n

Die Qualit\u00e4t, insbesondere die Hyalinit\u00e4t des Mediums h\u00e4ngt vor allem von der Qualit\u00e4t des Gummi arabicum ab. Tr\u00fcbungen sind meist auf verunreinigtes Gummi arabicum zur\u00fcckzuf\u00fchren.<\/p>\n

Das Aufziehen\u00a0der Larven auf Objekttr\u00e4ger wird wie folgt durchgef\u00fchrt: Die Larven werden aus dem Vorkonservierungsmedium zun\u00e4chst in ca. 50%iges Ethanol \u00fcberf\u00fchrt. Nach ca. 10 Minuten kann man sie auf einem Objekttr\u00e4ger in einen Tropfen Medium nach Hoyer einbringen, ausrichten und mit einem Deckglas abdecken.<\/p>\n

***<\/p>\n

Nach ca. zwei Wochen Trocknungszeit ist das Medium im Randbereich soweit ausgeh\u00e4rtet, dass das Deckglas fest fixiert ist. Nun muss die Kante zwischen Objekttr\u00e4ger und Deckglas mit einem geeigneten Umrandungslack versiegelt werden, um eine weitere Austrocknung, die das Pr\u00e4parat zerst\u00f6ren w\u00fcrde, zu verhindern.<\/p>\n

Umrandungslacke sollten bestimmte Kriterien erf\u00fcllen:\u00a0Sie m\u00fcssen eine starke Dampfsperre bilden,\u00a0um eine Verdunstung von Wasser aus dem Einschlussmedium zu verhindern;\u00a0Sie m\u00fcssen resistent gegen Immersions\u00f6l sein; sie sollten sich gut auftragen lassen, so dass auch umrandete Pr\u00e4parate nicht verschmiert aussehen, sondern eine gewisse \u00c4sthetik besitzen.<\/p>\n

Besonders geeignet als Umrandungslack ist Schellack, den man am besten selbst herstellt. Dazu wird heller Bl\u00e4tterschellack in soviel Ethanol gel\u00f6st, dass eine noch gut flie\u00dfende L\u00f6sung von ausreichend hoher Viskosit\u00e4t und hohem Festk\u00f6rpergehalt entstehen. In diese\u00a0Schellackl\u00f6sung wird Acetylenru\u00df (sogenannter \u201eFlammru\u00df\u201c, als schwarze Pigmentfarbe im Farbenhandel erh\u00e4ltlich) einger\u00fchrt. Das Einf\u00e4rben des Lackes mit Flammru\u00df bietet den Vorteil, dass eventuelle L\u00fccken leichter erkannt und dann durch eine zweite Lackschicht beseitigt werden k\u00f6nnen. Der so hergestellte Deckglaslack liefert Ringe mit seidenmatter Oberfl\u00e4che. Bevorzugt man schwarz gl\u00e4nzende Ringe, so setzt man dem Lack etwa 5 bis 10% Kolophonium (bezogen auf den Schellackanteil) zu.\u00a0Der Auftrag erfolgt auf einer Lackringdrehscheibe. Hier muss man durch Versuche ausprobieren, ob der Lack die richtige Konsistenz hat\u00a0und ausreichend gut deckt.[\/vc_column_text][\/vc_tta_section][\/vc_tta_tabs][\/vc_column][\/vc_row]<\/p>\n<\/div>","protected":false},"excerpt":{"rendered":"

[vc_row][vc_column][vc_raw_html css=“.vc_custom_1485895119019{padding-right: 8px !important;}“]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[\/vc_raw_html][vc_tta_tabs style=“outline“ color=“black“ spacing=“2″ active_section=“1″ no_fill_content_area=“true“][vc_tta_section title=“Fangmethoden“ tab_id=“1483906386328-ccefb9f2-1a9c“][vc_column_text css_animation=“bottom-to-top“ css=“.vc_custom_1485733907873{padding-right: 20px !important;padding-left: 20px !important;}“]Fangmethoden Mit dem Klopfnetz am Wacholder (Fotos: J\u00f6rg Weiss)   Selektive Methoden: Fransenfl\u00fcgler lassen sich sehr gut mit Klopfnetzen oder -schirmen aus Baumwolltuch (Nesselstoff) erfassen. Der Klopfschirm wird dabei unter die Vegetation gehalten und die Pflanzen mittels eines Stockes…<\/p>\n","protected":false},"author":3,"featured_media":0,"parent":33,"menu_order":0,"comment_status":"closed","ping_status":"closed","template":"","meta":{"footnotes":""},"class_list":["post-380","page","type-page","status-publish","hentry"],"_links":{"self":[{"href":"https:\/\/www.thrips-id.com\/de\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/380","targetHints":{"allow":["GET"]}}],"collection":[{"href":"https:\/\/www.thrips-id.com\/de\/wp-json\/wp\/v2\/pages"}],"about":[{"href":"https:\/\/www.thrips-id.com\/de\/wp-json\/wp\/v2\/types\/page"}],"author":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/www.thrips-id.com\/de\/wp-json\/wp\/v2\/users\/3"}],"replies":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/www.thrips-id.com\/de\/wp-json\/wp\/v2\/comments?post=380"}],"version-history":[{"count":74,"href":"https:\/\/www.thrips-id.com\/de\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/380\/revisions"}],"predecessor-version":[{"id":7535,"href":"https:\/\/www.thrips-id.com\/de\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/380\/revisions\/7535"}],"up":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/www.thrips-id.com\/de\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/33"}],"wp:attachment":[{"href":"https:\/\/www.thrips-id.com\/de\/wp-json\/wp\/v2\/media?parent=380"}],"curies":[{"name":"wp","href":"https:\/\/api.w.org\/{rel}","templated":true}]}}